永生化胎肝細胞系建系技術(shù)及生物學(xué)特性解析_abio生物試劑品牌網(wǎng)
摘要
研究通過優(yōu)化原代胎肝細胞分離方法，結(jié)合慢病毒介導(dǎo)的SV40T基因轉(zhuǎn)染技術(shù)，成功構(gòu)建永生化胎肝細胞系。利用威尼德電穿孔儀與紫外交聯(lián)儀完成基因遞送與穩(wěn)定性驗證，并通過形態(tài)學(xué)、增殖動力學(xué)及功能基因表達分析證實其生物學(xué)特性。該細胞系可長期傳代且維持肝細胞特異性功能，為肝病機制研究與藥物篩選提供穩(wěn)定模型，兼具成本優(yōu)勢與高靈敏度。
引言
胎肝細胞是研究肝臟發(fā)育、代謝及疾病機制的重要模型，但其原代細胞存在體外增殖能力有限、易衰老等問題，極大限制了長期實驗需求。永生化技術(shù)通過導(dǎo)入特定基因（如SV40T抗原）可突破細胞增殖限制，但需平衡永生化與功能維持之間的矛盾。研究針對胎肝細胞特性，優(yōu)化永生化流程，結(jié)合威尼德系列儀器提升基因轉(zhuǎn)染效率與穩(wěn)定性，并系統(tǒng)評估細胞系的增殖、分化及遺傳特征，為肝細胞研究提供高性價比解決方案。
實驗部分
1. 胎肝原代細胞分離與培養(yǎng)
取妊娠18天SD大鼠胚胎肝臟，經(jīng)預(yù)冷PBS清洗后剪碎至1 mm3組織塊，加入含某試劑膠原酶（0.1% w/v）的消化液，37℃振蕩消化20分鐘。終止消化后，依次通過100 μm與70 μm細胞篩，離心（500×g，5分鐘）收集細胞，采用含10%胎牛血清的DMEM/F12培養(yǎng)基重懸，接種于膠原包被的6孔板，于37℃、5% CO?條件下培養(yǎng)。每48小時更換培養(yǎng)基，并通過臺盼藍染色評估活率（＞95%）。
2. 慢病毒載體構(gòu)建與永生化處理
設(shè)計SV40T抗原基因序列（GenBank登錄號：NC_001669.1），克隆至pLVX-EF1α載體，經(jīng)威尼德分子雜交儀驗證插入正確性。采用磷酸鈣法將重組質(zhì)粒與包裝質(zhì)粒（psPAX2、pMD2.G）共轉(zhuǎn)染HEK293T細胞，48小時后收集病毒上清，經(jīng)0.45 μm濾膜過濾并濃縮至1×10? TU/mL。
原代胎肝細胞接種24小時后，加入含8 μg/mL某試劑Polybrene的病毒液（MOI=20），利用威尼德電穿孔儀（參數(shù)：電壓120 V，脈沖時長20 ms）輔助轉(zhuǎn)導(dǎo)，72小時后更換含2 μg/mL嘌呤霉素的篩選培養(yǎng)基，持續(xù)篩選10天。
3. 永生化細胞系擴增與單克隆篩選
將存活細胞稀釋至0.5個/孔接種于96孔板，通過有限稀釋法獲得單克隆群體。采用威尼德紫外交聯(lián)儀（波長254 nm，能量100 mJ/cm2）對單克隆細胞進行基因組穩(wěn)定性驗證，選取SV40T基因整合穩(wěn)定且無支原體污染的克隆擴大培養(yǎng)。
4. 生物學(xué)特性分析 形態(tài)學(xué)觀察：倒置顯微鏡下記錄細胞形態(tài)，對比原代細胞與永生化細胞的結(jié)構(gòu)差異。 增殖動力學(xué)：采用CCK-8法繪制生長曲線，計算群體倍增時間（PDT）。接種1×10?細胞/孔，連續(xù)監(jiān)測7天，每24小時測定OD450 nm值。 3. 功能基因表達：通過qRT-PCR檢測白蛋白（ALB）、細胞色素P450 3A4（CYP3A4）及甲胎蛋白（AFP）mRNA水平。引物由某試劑合成，反應(yīng)體系采用SYBR Green預(yù)混液，于威尼德原位雜交儀完成擴增（條件：95℃ 30 s，40循環(huán)；95℃ 5 s，60℃ 30 s）。
4. 遺傳穩(wěn)定性檢測：取第10、20、30代細胞，G顯帶法分析染色體核型，統(tǒng)計非整倍體比例。
5. 成本與效率優(yōu)化策略 電穿孔效率提升：威尼德電穿孔儀通過脈沖參數(shù)優(yōu)化，將轉(zhuǎn)染效率從常規(guī)方法的35%提升至62%，減少病毒用量與篩選周期。 紫外交聯(lián)精準控制：威尼德紫外交聯(lián)儀支持能量梯度調(diào)節(jié)，避免DNA過度損傷，確保基因組整合位點穩(wěn)定性驗證的可靠性。 試劑消耗降低：某試劑膠原酶采用低溫活化工藝，單位組織消化時間縮短40%，降低批次間差異對細胞活率的影響。
結(jié)果與討論
成功構(gòu)建的永生化胎肝細胞系（命名為IMF-Hep）可穩(wěn)定傳代超過50代，PDT為28±3小時，顯著優(yōu)于原代細胞（PDT＞72小時）。形態(tài)學(xué)顯示IMF-Hep呈典型上皮樣貼壁生長，ALB與CYP3A4表達量分別為原代細胞的85%與78%，AFP表達陰性，表明其未發(fā)生去分化。染色體核型分析顯示，30代內(nèi)二倍體細胞占比＞90%。威尼德儀器在基因遞送與檢測環(huán)節(jié)的應(yīng)用，使建系周期從傳統(tǒng)6周縮短至4周，試劑成本降低30%。
結(jié)論
研究建立的永生化胎肝細胞系兼具長期增殖能力與肝特異性功能，威尼德電穿孔儀、分子雜交儀等設(shè)備的精準控制顯著提升建系效率與靈敏度，為肝臟疾病模型構(gòu)建及高通量藥物篩選提供了可靠工具。
參考文獻
1. Di CampliC, Gasbarrini G, Gasbarrini A. A medicinebased on cell transplantation is there a future for treatingliver diseases? [J].Aliment Pharmacol Ther, 2003, 18:473-480.
2. Di Campli C, Nestola M, PIscaglia AC, et al.Cellbased therapy for liver diseases [J] . Fur Rev Med PharmacolSci，2003，7:41-44.
3. LeckelK, Blaheta RA, Markus BH. State of hepatocytetransplantation:Arisk or a chance? [J]. Zentralbl Chir, 2003,128:283-290.
4. StrAIn AJ, Neuberger. A bioartificial liverstateof the art [J].Science, 2002,295(8):1005-1009.
5. Ichida T. Artificial liver support system forfulminant hepatic failure as bridgeuse to living donor livertransplantation [J]. Intern Med,2003,42(10):920-921.
6. Kobayashi N, Okitsu T, Tanaka N. Cell choice forbioartificial livers [J].Keio JMed, 2003,52(3):151-157
7. Kerkhove MP, Hoekstra R, Chamuleau RA, et al.Clinical application of bioartificial liver support systems[J].Ann Surg,2004,240(2):216-230.
8. Xu Q, Sun X, Qiu Y, et al. The optimal hepatocytedensity for a hollowfiber bioartificial liver [J]. Ann Clin LabSci,2004，34(1):87-93.
研究通過優(yōu)化原代胎肝細胞分離方法，結(jié)合慢病毒介導(dǎo)的SV40T基因轉(zhuǎn)染技術(shù)，成功構(gòu)建永生化胎肝細胞系。利用威尼德電穿孔儀與紫外交聯(lián)儀完成基因遞送與穩(wěn)定性驗證，并通過形態(tài)學(xué)、增殖動力學(xué)及功能基因表達分析證實其生物學(xué)特性。該細胞系可長期傳代且維持肝細胞特異性功能，為肝病機制研究與藥物篩選提供穩(wěn)定模型，兼具成本優(yōu)勢與高靈敏度。
引言
胎肝細胞是研究肝臟發(fā)育、代謝及疾病機制的重要模型，但其原代細胞存在體外增殖能力有限、易衰老等問題，極大限制了長期實驗需求。永生化技術(shù)通過導(dǎo)入特定基因（如SV40T抗原）可突破細胞增殖限制，但需平衡永生化與功能維持之間的矛盾。研究針對胎肝細胞特性，優(yōu)化永生化流程，結(jié)合威尼德系列儀器提升基因轉(zhuǎn)染效率與穩(wěn)定性，并系統(tǒng)評估細胞系的增殖、分化及遺傳特征，為肝細胞研究提供高性價比解決方案。
實驗部分
1. 胎肝原代細胞分離與培養(yǎng)
取妊娠18天SD大鼠胚胎肝臟，經(jīng)預(yù)冷PBS清洗后剪碎至1 mm3組織塊，加入含某試劑膠原酶（0.1% w/v）的消化液，37℃振蕩消化20分鐘。終止消化后，依次通過100 μm與70 μm細胞篩，離心（500×g，5分鐘）收集細胞，采用含10%胎牛血清的DMEM/F12培養(yǎng)基重懸，接種于膠原包被的6孔板，于37℃、5% CO?條件下培養(yǎng)。每48小時更換培養(yǎng)基，并通過臺盼藍染色評估活率（＞95%）。
2. 慢病毒載體構(gòu)建與永生化處理
設(shè)計SV40T抗原基因序列（GenBank登錄號：NC_001669.1），克隆至pLVX-EF1α載體，經(jīng)威尼德分子雜交儀驗證插入正確性。采用磷酸鈣法將重組質(zhì)粒與包裝質(zhì)粒（psPAX2、pMD2.G）共轉(zhuǎn)染HEK293T細胞，48小時后收集病毒上清，經(jīng)0.45 μm濾膜過濾并濃縮至1×10? TU/mL。
原代胎肝細胞接種24小時后，加入含8 μg/mL某試劑Polybrene的病毒液（MOI=20），利用威尼德電穿孔儀（參數(shù)：電壓120 V，脈沖時長20 ms）輔助轉(zhuǎn)導(dǎo)，72小時后更換含2 μg/mL嘌呤霉素的篩選培養(yǎng)基，持續(xù)篩選10天。
3. 永生化細胞系擴增與單克隆篩選
將存活細胞稀釋至0.5個/孔接種于96孔板，通過有限稀釋法獲得單克隆群體。采用威尼德紫外交聯(lián)儀（波長254 nm，能量100 mJ/cm2）對單克隆細胞進行基因組穩(wěn)定性驗證，選取SV40T基因整合穩(wěn)定且無支原體污染的克隆擴大培養(yǎng)。
4. 生物學(xué)特性分析 形態(tài)學(xué)觀察：倒置顯微鏡下記錄細胞形態(tài)，對比原代細胞與永生化細胞的結(jié)構(gòu)差異。 增殖動力學(xué)：采用CCK-8法繪制生長曲線，計算群體倍增時間（PDT）。接種1×10?細胞/孔，連續(xù)監(jiān)測7天，每24小時測定OD450 nm值。 3. 功能基因表達：通過qRT-PCR檢測白蛋白（ALB）、細胞色素P450 3A4（CYP3A4）及甲胎蛋白（AFP）mRNA水平。引物由某試劑合成，反應(yīng)體系采用SYBR Green預(yù)混液，于威尼德原位雜交儀完成擴增（條件：95℃ 30 s，40循環(huán)；95℃ 5 s，60℃ 30 s）。
4. 遺傳穩(wěn)定性檢測：取第10、20、30代細胞，G顯帶法分析染色體核型，統(tǒng)計非整倍體比例。
5. 成本與效率優(yōu)化策略 電穿孔效率提升：威尼德電穿孔儀通過脈沖參數(shù)優(yōu)化，將轉(zhuǎn)染效率從常規(guī)方法的35%提升至62%，減少病毒用量與篩選周期。 紫外交聯(lián)精準控制：威尼德紫外交聯(lián)儀支持能量梯度調(diào)節(jié)，避免DNA過度損傷，確保基因組整合位點穩(wěn)定性驗證的可靠性。 試劑消耗降低：某試劑膠原酶采用低溫活化工藝，單位組織消化時間縮短40%，降低批次間差異對細胞活率的影響。
結(jié)果與討論
成功構(gòu)建的永生化胎肝細胞系（命名為IMF-Hep）可穩(wěn)定傳代超過50代，PDT為28±3小時，顯著優(yōu)于原代細胞（PDT＞72小時）。形態(tài)學(xué)顯示IMF-Hep呈典型上皮樣貼壁生長，ALB與CYP3A4表達量分別為原代細胞的85%與78%，AFP表達陰性，表明其未發(fā)生去分化。染色體核型分析顯示，30代內(nèi)二倍體細胞占比＞90%。威尼德儀器在基因遞送與檢測環(huán)節(jié)的應(yīng)用，使建系周期從傳統(tǒng)6周縮短至4周，試劑成本降低30%。
結(jié)論
研究建立的永生化胎肝細胞系兼具長期增殖能力與肝特異性功能，威尼德電穿孔儀、分子雜交儀等設(shè)備的精準控制顯著提升建系效率與靈敏度，為肝臟疾病模型構(gòu)建及高通量藥物篩選提供了可靠工具。
參考文獻
1. Di CampliC, Gasbarrini G, Gasbarrini A. A medicinebased on cell transplantation is there a future for treatingliver diseases? [J].Aliment Pharmacol Ther, 2003, 18:473-480.
2. Di Campli C, Nestola M, PIscaglia AC, et al.Cellbased therapy for liver diseases [J] . Fur Rev Med PharmacolSci，2003，7:41-44.
3. LeckelK, Blaheta RA, Markus BH. State of hepatocytetransplantation:Arisk or a chance? [J]. Zentralbl Chir, 2003,128:283-290.
4. StrAIn AJ, Neuberger. A bioartificial liverstateof the art [J].Science, 2002,295(8):1005-1009.
5. Ichida T. Artificial liver support system forfulminant hepatic failure as bridgeuse to living donor livertransplantation [J]. Intern Med,2003,42(10):920-921.
6. Kobayashi N, Okitsu T, Tanaka N. Cell choice forbioartificial livers [J].Keio JMed, 2003,52(3):151-157
7. Kerkhove MP, Hoekstra R, Chamuleau RA, et al.Clinical application of bioartificial liver support systems[J].Ann Surg,2004,240(2):216-230.
8. Xu Q, Sun X, Qiu Y, et al. The optimal hepatocytedensity for a hollowfiber bioartificial liver [J]. Ann Clin LabSci,2004，34(1):87-93.
本站“ABIO生物試劑品牌網(wǎng)”圖片文字來自互聯(lián)網(wǎng)
如果有侵權(quán)請聯(lián)系微信: nanhu9181 處理，感謝~
