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牛羊布魯氏菌LPS蛋白的生物學(xué)特性、真核 / 原核表達(dá)特點及應(yīng)用價值_abio生物試劑品牌網(wǎng)

abiopp4個月前 (08-10)技術(shù)64

布魯氏菌(Brucella)的脂多糖(LPS) 是其細(xì)胞壁外膜的主要成分,也是引發(fā)宿主免疫反應(yīng)的關(guān)鍵致病因子和抗原物質(zhì)。在牛羊布魯氏菌病的診斷、免疫機(jī)制研究及疫苗開發(fā)中,LPS 具有不可替代的地位。以下從其生物學(xué)特性真核 / 原核表達(dá)特點及應(yīng)用價值展開解析:

一、布魯氏菌 LPS 的結(jié)構(gòu)與生物學(xué)功能
  1. 分子結(jié)構(gòu)
    布魯氏菌 LPS 屬于光滑型 LPS(S-LPS),由三部分共價連接組成:

    • O - 抗原多糖鏈(最外層):由重復(fù)的四糖單位(如鼠李糖、甘露糖等)組成,是布魯氏菌血清型分類的核心依據(jù)(如牛種布魯氏菌主要為 A 抗原,羊種為 M 抗原,A:M 比例差異決定血清型);
    • 核心多糖:連接 O - 抗原與脂質(zhì) A,含保守的己糖和庚糖結(jié)構(gòu);
    • 脂質(zhì) A(內(nèi)層,錨定于外膜):由磷酸化的葡萄糖胺二糖和脂肪酸鏈組成,是 LPS 毒性的主要來源,可激活宿主 TLR4 信號通路引發(fā)炎癥反應(yīng)。
  2. 免疫原性與致病性

    • 免疫原性:O - 抗原是布魯氏菌最主要的保護(hù)性抗原之一,感染牛羊后可誘導(dǎo)產(chǎn)生高效價的特異性抗體(IgM 先出現(xiàn),隨后轉(zhuǎn)為 IgG,持續(xù)數(shù)月至數(shù)年),是傳統(tǒng)血清學(xué)診斷的核心靶標(biāo);
    • 致病性:脂質(zhì) A 可刺激宿主細(xì)胞釋放 TNF-α、IL-6 等炎癥因子,引發(fā)發(fā)熱、組織損傷等病理反應(yīng),也是布魯氏菌逃避宿主免疫清除的重要機(jī)制(通過抑制吞噬細(xì)胞的殺菌功能)。
二、布魯氏菌 LPS 的表達(dá)與制備特點

LPS 是細(xì)菌自身合成的復(fù)雜糖脂類物質(zhì),無法通過傳統(tǒng)基因工程(原核 / 真核表達(dá)系統(tǒng))直接表達(dá),其制備依賴于細(xì)菌培養(yǎng)后的提取純化,原因如下:

  • LPS 的合成涉及數(shù)十種酶的協(xié)同作用(如糖基轉(zhuǎn)移酶、脂質(zhì)合成酶),且需通過細(xì)菌內(nèi)膜 - 外膜的跨膜轉(zhuǎn)運(yùn)組裝,無法在單一表達(dá)系統(tǒng)中重建完整合成路徑;
  • O - 抗原的糖鏈長度和修飾(如乙酰化)具有菌株特異性,人工表達(dá)難以模擬天然結(jié)構(gòu)。

 

常規(guī)提取方法

  1. 熱酚 - 水法:通過苯酚與熱水的分層萃取,分離 LPS(溶于水相)與蛋白質(zhì)(溶于酚相),適用于大規(guī)模制備;
  2. 超速離心法:利用 LPS 的密度差異(約 1.4 g/cm3),通過蔗糖密度梯度離心純化,純度更高但產(chǎn)量較低;
  3. 去垢劑法:用 Triton X-114 等去垢劑裂解細(xì)菌,選擇性沉淀 LPS,操作簡便但可能殘留去垢劑影響活性。
三、LPS 在牛羊布魯氏菌病防控中的應(yīng)用
  1. 血清學(xué)診斷

    • 基于 LPS 的檢測方法是目前基層最常用的診斷手段,包括: 
      • 虎紅平板凝集試驗(RBPT):以 LPS 為抗原,快速篩查抗體陽性個體,敏感性高(約 90%)但特異性較低(因與其他革蘭氏陰性菌 LPS 存在交叉反應(yīng));
      • 試管凝集試驗(SAT):定量檢測抗體效價,用于確診和疫情評估,依賴 LPS 的完整抗原性;
      • ELISA:以純化 LPS 包被酶標(biāo)板,檢測特異性 IgG 抗體,靈敏度和特異性優(yōu)于凝集試驗,但仍需注意交叉反應(yīng)(如與大腸桿菌 O157 的交叉率約 5%)。
  2. 疫苗研發(fā)的雙刃劍

    • 傳統(tǒng)布魯氏菌疫苗(如牛種 S19 株、羊種 Rev.1 株)均為光滑型菌株,其保護(hù)力主要依賴 LPS 誘導(dǎo)的免疫反應(yīng),但存在缺陷: 
      • 疫苗免疫后會產(chǎn)生抗 LPS 抗體,與自然感染難以區(qū)分,干擾疫情監(jiān)測;
      • LPS 的毒性可能導(dǎo)致接種動物發(fā)熱、流產(chǎn)(尤其是孕畜)。
    • 新型疫苗研發(fā)趨勢:開發(fā)粗糙型菌株疫苗(如 RB51 株),其 LPS 缺失 O - 抗原,可避免誘導(dǎo)抗 O - 抗原抗體,解決鑒別診斷問題,但保護(hù)力略低于光滑型疫苗,需與其他抗原(如 BP26、Omp16)聯(lián)合使用。
  3. 致病機(jī)制研究

    • LPS 是布魯氏菌入侵宿主的關(guān)鍵因子:其 O - 抗原可與宿主細(xì)胞表面的糖受體(如巨噬細(xì)胞的甘露糖受體)結(jié)合,促進(jìn)細(xì)菌黏附與內(nèi)化;
    • 脂質(zhì) A 通過激活 TLR4-NF-κB 通路引發(fā)炎癥反應(yīng),同時抑制中性粒細(xì)胞的趨化作用,幫助細(xì)菌在巨噬細(xì)胞內(nèi)存活繁殖,解析這一機(jī)制可為抗炎藥物開發(fā)提供靶點。
四、局限性與改進(jìn)方向
  1. 交叉反應(yīng)問題
    光滑型 LPS 的 O - 抗原與某些腸道菌(如沙門氏菌、大腸桿菌)存在共同抗原決定簇,導(dǎo)致診斷假陽性。解決方案:

    • 純化 O - 抗原的特異性片段(如羊種布魯氏菌的 M 抗原獨特四糖),降低交叉反應(yīng);
    • 聯(lián)合檢測 LPS 與 BP26 抗體:LPS 抗體陽性 + BP26 抗體陽性可判定為自然感染,僅 LPS 陽性可能為疫苗免疫或交叉反應(yīng)。
  2. 標(biāo)準(zhǔn)化制備
    不同菌株、不同提取方法獲得的 LPS 在純度、糖鏈結(jié)構(gòu)上差異較大,導(dǎo)致診斷試劑批次間穩(wěn)定性差。需建立:

    • 統(tǒng)一的標(biāo)準(zhǔn)菌株(如羊種 16M 株、牛種 544 株)作為 LPS 來源;
    • 標(biāo)準(zhǔn)化提取工藝(如熱酚 - 水法 + 超濾純化),確保 LPS 的 O - 抗原完整率 > 90%。

布魯氏菌 LPS 作為細(xì)菌的核心抗原和致病因子,在牛羊布魯氏菌病的診斷和傳統(tǒng)疫苗中發(fā)揮著不可替代的作用,但其結(jié)構(gòu)復(fù)雜性限制了人工表達(dá),只能依賴細(xì)菌提取。未來需通過純化工藝優(yōu)化和聯(lián)合檢測策略,克服交叉反應(yīng)和標(biāo)準(zhǔn)化問題,同時結(jié)合新型疫苗研發(fā)(如 LPS 與蛋白抗原的融合疫苗),進(jìn)一步提升防控效果。

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