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WB實驗中內參抗體選擇的原則及技巧_abio生物試劑品牌網

abiopp5個月前 (08-08)技術67
內參抗體(HousekeePIng Antibodies)是實驗中的“標尺”,用于校正樣本量差異、評估實驗體系穩定性(如Western Blot、免疫組化)。選擇合適的內參抗體是確保數據可靠性的關鍵一步,尤其對高校科研中基因表達、蛋白定量等研究至關重要。

選錯內參 = 實驗白做
別慌!
這份指南帶你精準避坑!
 

一、四大黃金原則

 
01 樣本種屬與組織類型
哺乳動物:β-actin、GAPDH、β-tubulin 是百搭選手,適用全細胞 / 胞漿檢測。
植物樣本:Plant actin 或 Rubisco 更靠譜,避免跨物種干擾。
特殊物種:如酵母、昆蟲,建議查文獻選保守管家基因(如 Histone H3)。

02 分子量差異            
黃金法則:目的蛋白與內參分子量差>5kDa,避免條帶重疊。例:目的蛋白 45kDa,別選 β-actin(42kDa),換 GAPDH(36kDa)或 β-tubulin(50kDa)。
進階技巧:用預染 Marker 定位,轉膜后剪膜分區域檢測,省時省力。若目的蛋白與內參分子量分子量接近,可選用4-20%梯度膠,提高分辨率。

 03 亞細胞定位


 04 實驗條件              
代謝研究:缺氧、糖尿病模型慎用 GAPDH(其表達受糖酵解影響)。
細胞增殖:c-Jun 表達波動大,換用 PCNA 更穩定。
凋亡實驗:Lamin、TBP 易降解,優先選 Histone H3。

  二、實戰技巧 01 抗體類型與標記選擇 
單克隆 vs 多克隆
單抗:特異性強,適合跨物種檢測。
多抗:親和力高但可能有非特異結合,適合保守蛋白。

標記類型
直接檢測:選 HRP 或熒光標記抗體。
分步檢測:用未標記抗體 + 二抗,適合多重檢測(需注意宿主種屬匹配)。

02 實驗條件優化        
條帶異常
信號弱:提高抗體濃度(如從 1:1000 增至 1:500)或延長曝光時間。
雜帶多:降低抗體濃度或改用單抗。

省時技巧
分膜檢測:轉膜后按分子量剪膜,同時孵育目的蛋白和內參抗體。
一抗復用:用 Strip 緩沖液洗膜后,重新孵育另一抗體(如先測目的蛋白,再測內參)。

  三、常見問題Q&A Q1: 為什么我的內參條帶總是不齊?  
A:可能是上樣量不均或轉膜效率差異。建議:用 BCA 法精確定量,上樣前充分渦旋混勻。轉膜時用預染 Marker 監控,確保膜與膠緊密貼合。

Q2:如何避免抗體交叉反應?       
 A:選擇不同宿主來源的抗體(如兔抗目的蛋白 + 鼠抗內參),并用對應二抗檢測。

Q3: PTM研究如何選內參?            
A:檢測磷酸化蛋白時,用未修飾的總蛋白(如 p38 總抗體)作為內參,而非通用內參。

“精準實驗,從選對抗體開始!”

內參抗體 = 物種匹配 + 分子量差>5kDa + 亞細胞定位一致 + 實驗條件適配

無論是初入實驗室的科研新人,還是追求極致精準的資深學者,選擇經過嚴格驗證的內參抗體,都是實驗成功的基石。

萬生昊天內參抗體,專為高校科研場景優化:
高特異性:嚴格驗證,目標條帶清晰無雜帶。
廣適用性:覆蓋多種樣本(人類、小鼠、大鼠等)及實驗需求(WB、IF、IP等)。
嚴格質控:批間一致性高,穩定性優異,減少實驗變量。靈
活選擇:提供單克隆/多克隆抗體及不同宿主來源(兔、小鼠等),匹配不同實驗體系。

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