莫能菌素單克隆抗體(Monensin抗體)的制備、性能、應用_abio生物試劑品牌網
莫能菌素(Monensin)是一種聚醚類離子載體抗生素,主要用于畜禽抗球蟲病和促進生長,但其在動物源性食品中的殘留可能對人體健康產生潛在風險,因此建立高效的殘留檢測方法至關重要。莫能菌素單克隆抗體作為特異性識別工具,在食品安全檢測領域發揮著關鍵作用,以下從制備、性能、應用等方面進行詳細介紹:
一、莫能菌素單克隆抗體的制備流程莫能菌素為小分子化合物(分子量 670.9 g/mol),自身免疫原性較弱,需通過與載體蛋白偶聯構建人工抗原以誘導免疫反應,具體制備步驟如下:
1. 抗原設計與合成
- 半抗原處理:莫能菌素分子含羧基(-COOH)和多個羥基(-OH),可通過羧基與載體蛋白的氨基偶聯,常用方法包括:
- 碳二亞胺(EDC)法:直接活化莫能菌素的羧基,使其與牛血清白蛋白(BSA)、鑰孔血藍蛋白(KLH)等載體蛋白的氨基形成酰胺鍵,保留莫能菌素的聚醚鏈和內酯環核心結構。
- 琥珀酸酐衍生化法:通過引入間隔臂(如琥珀酸酯)增加半抗原與載體蛋白的空間距離,減少載體蛋白對莫能菌素識別位點的空間位阻,提高抗體的特異性和親和力。
- 抗原驗證:通過紫外光譜(UV)、SDS-PAGE 或質譜(MS)確認偶聯成功,偶聯比(莫能菌素分子:載體蛋白分子)通常控制在 10-30:1,以保證免疫原性。
- 免疫方案:選擇 Balb/c 小鼠作為免疫動物,首次免疫采用莫能菌素 - KLH 偶聯物(100-200 μg / 只)與弗氏完全佐劑乳化后腹腔注射;間隔 2-3 周用弗氏不完全佐劑加強免疫(共 4-6 次),末次免疫后 3-5 天采集血清,通過間接 ELISA 檢測血清效價,當效價≥1:10?時進行細胞融合。
- 細胞融合:取免疫小鼠脾臟淋巴細胞與 SP2/0 骨髓瘤細胞,在 PEG 4000(分子量 1500-4000)作用下融合,融合后的細胞用 HAT 培養基篩選(淘汰未融合的淋巴細胞和骨髓瘤細胞),獲得雜交瘤細胞。
- 篩選方法:采用間接競爭 ELISA,以莫能菌素 - OVA(卵清蛋白)包被酶標板,加入細胞上清和游離莫能菌素,通過競爭結合反應篩選能特異性識別莫能菌素的陽性克隆。
- 特異性驗證:重點檢測與結構類似物(如鹽霉素、馬杜霉素、拉沙里菌素)的交叉反應率(要求<5%),通過有限稀釋法進行 3-4 次亞克隆,獲得穩定分泌單克隆抗體的細胞株。
優質的莫能菌素單克隆抗體需具備以下核心性能:
1. 特異性- 能精準識別莫能菌素的聚醚鏈骨架和內酯環結構,與其他聚醚類抗生素的交叉反應率通常<3%,與非聚醚類抗生素(如四環素、青霉素)無交叉反應,確保檢測結果的特異性。
- 親和力強(KD 值多為 10??-10?1? mol/L),在間接競爭 ELISA 中,半數抑制濃度(IC50)可達 0.3-3 ng/mL,最低檢測限(LOD)≤0.1 ng/mL,滿足各國殘留限量標準(如歐盟規定禽肉中莫能菌素最大殘留量為 200 μg/kg)。
- 抗體亞型多為 IgG1,在 - 20℃冷凍條件下可穩定保存 2 年以上(活性損失<10%),4℃冷藏可保存 1 個月,耐受 pH 4.0-9.5 和 37℃短期處理,適用于 ELISA、膠體金免疫層析(GICA)、免疫傳感器等檢測平臺。
- 小規模生產:將陽性雜交瘤細胞腹腔注射到經降植烷預處理的 Balb/c 小鼠,收集腹水(抗體濃度 1-5 mg/mL),通過辛酸 - 硫酸銨沉淀法初步純化,純度可達 80% 以上。
- 大規模生產:采用無血清懸浮培養技術(如生物反應器)培養雜交瘤細胞,通過 Protein A 或 Protein G 親和層析純化,純度≥95%,可滿足商品化檢測試劑盒的生產需求。
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動物源性食品檢測
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飼料質量監控
- 監測飼料中莫能菌素的添加量(常規添加量為 50-120 mg/kg),避免過量添加導致動物中毒或耐藥性問題。
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環境殘留分析
- 檢測養殖場廢水、土壤中莫能菌素的殘留,評估其對生態環境的潛在影響。
- 樣本前處理:動物組織樣本需經乙腈或甲醇提取,離心后取上清,通過固相萃取柱(如 C18 柱)凈化,去除脂類、蛋白質等干擾物質。
- 基質效應消除:復雜基質(如高脂肪肉類)中可添加 1% 酪蛋白或 0.05% 吐溫 - 20,封閉非特異性結合位點,提高檢測準確性。
- 儲存與操作:抗體需分裝后 - 20℃冷凍保存,避免反復凍融;工作液現配現用,使用前需平衡至室溫并充分混勻。
莫能菌素單克隆抗體憑借高特異性、高靈敏度和良好的穩定性,成為莫能菌素殘留檢測的核心工具,在保障食品安全和環境監測中具有重要應用價值。未來結合新型標記技術(如量子點、熒光微球)和自動化檢測平臺,可進一步提升檢測效率和靈敏度,推動其在基層監管中的廣泛應用。
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