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一種整合DDA-PRM-dMRM的新方案實現高風險HCPs的定性定量分析_abio生物試劑品牌網

abiopp5個月前 (08-06)技術61
宿主細胞蛋白(HCPs)是生物治療藥物中與工藝相關的關鍵雜質,會影響藥物的穩定性和安全性。治療性蛋白與殘留HCPs成分的動態范圍極大,往往大于5個數量級,導致高險HCPs檢測更加困難。LC-MS/MS檢測可以突破傳統免疫分析方法在靈敏度和特異性方面的局限性,已成為有效檢測和定量HCPs的關鍵工具,可指導下游純化工藝并監測HCPs清除效果。
 
2025年6月,中國醫學科學院北京協和醫學院的張金蘭教授課題組在 Journal of Proteome Research發表了一套新的HCPs監測方法 [1],首先通過數據依賴采集(DDA)構建包含所有潛在HCPs的CHO細胞蛋白庫,然后對38種已報道的高風險HCPs進行了平行反應監測(PRM)和多重反應監測(MRM)交叉驗證,最終篩選出28種高風險HCPs及其特異性肽段和離子對信息。下一步建立并驗證了一種新的動態MRM(dMRM)方法,可以同時定量28種高風險HCPs。最后,應用上述策略分析了五個純化的單克隆抗體制備工藝樣品,通過DDA方法對未知HCPs進行全面分析,使用dMRM方法對28種已知高風險HCPs進行快速定量。總體而言,該策略能夠對已知和未知HCPs進行全面分析,指導生物制藥工藝的優化。本研究中DDA數據分析使用 PEAKS Studio完成。


潛在宿主細胞蛋白庫構建
許多研究傾向基于數據非依賴采集(DIA)的方法來檢測HCPs,這樣可以減少低豐度信號的缺失,提高蛋白質組的覆蓋深度,但DIA的譜圖處理更加復雜,也容易受到復雜基質的信號干擾。本研究中,作者選擇了以DDA的方式構建HCPs蛋白質譜圖庫,基于該庫直接生成PRM/MRM離子對列表,可確保工藝開發階段方法的一致性。為確保對低豐度HCPs鑒定的全面性,作者對中國倉鼠卵巢(CHO)細胞提取的全蛋白溶液,采用了兩種不同的酶切方案:自制溶液和EasyPep MS試劑盒。結果顯示,EasyPep MS試劑盒處理的樣本蛋白鑒定更多。最終采用EasyPep MS試劑盒、400ng質譜進樣和150min梯度的方法進行后續實驗(Figure S1)。最終構建了一個包含6863個蛋白質、143166條多肽的譜圖庫,超過了目前已報道的CHO細胞蛋白庫。
 


高風險HCPs預測及驗證
在上述已建立的譜圖庫基礎上,作者又整合了NIST CHO多肽譜圖庫,然后利用整合后的譜圖庫,在已報道的38種高風險HCPs中,預測出了36種蛋白的444 peptides、5787 precursors和3522 transitions。通過PRM和MRM對這36種蛋白的特異性肽段進行了交叉驗證,有效消除了背景和非特異性肽段的干擾,排除了在MRM和PRM數據中譜峰均較差的8個蛋白,最終驗證了28種高風險HCPs的47條unique peptides和141個 transitions(Table 2)。Figure 2展示了六類高風險HCPs中代表性肽段的b/y離子碎裂譜圖、PRM和MRM色譜圖。這些transitions在PRM模式下具有高特異性,在MRM模式下具有出色的靈敏度和重現性,確保了定量的可靠性。


方法驗證
在生物制藥下游生產中,去除殘留的HCPs對產品質量至關重要。大多數單克隆抗體(mAb)生產工藝需要將雜質降低至100ppm以下,不過某些具有免疫原性或生物活性的HCPs在低于這個標準的情況下仍然影響產品的安全性和有效性。因此,作者在0.1-100nmol的范圍內對標準曲線進行了驗證(等同于50kDa的HCP在10g/L的mAB溶液中的含量在0.5-500ppm 之間)。首先篩選出28個高風險HCPs中響應最高的28條peptides,并使用外源性合成同位素多肽LLIYGATNLADGVPSR*( 13C 6 15N 4-R)作為內標(IS)。為了模擬實際樣品狀態并將干擾降至最低,選擇以人血漿來源的IgG作為基質,然后配置至少6個濃度梯度繪制標準曲線,得到的相關系數R 2超過0.98。結果如Table S3所示,10種肽具有良好的線性(0.1 – 100nmol/L),21種肽的定量下限低于1 nmol/L),25種肽的上限達到100 nmol/L。除了LVQAQYWHDPIK的線性范圍較窄外,所有肽均涵蓋了下游純化過程中典型的HCP濃度范圍。此外,作者又在實際條件下對穩定性進行了驗證,包括在室溫(RT)下24小時的短期穩定性、凍融穩定性(從?80°C到室溫的三個凍融循環)以及在4°C下7天的長期穩定性。所有肽在相對誤差(RE)和相對標準偏差(RSD)±15.0%范圍內保持穩定。所有驗證結果均符合中國藥典對生物樣品的標準,這充分證明了該方法對28種高風險宿主細胞蛋白進行精確定量的穩健性,適用于生物制藥過程監測和質量控制。



方法應用
作者將上述方法應用于VEGF單克隆抗體下游純化的5個樣本,檢測其中的28種已知的高風險HCPs。DDA模式在細胞培養液(HCCF)中鑒定到1533種HCPs,在純化后的原料藥中鑒定到38種(Figure 4)。此外,DDA方法鑒定出了一些未被dMRM覆蓋的高風險HCP(如G3GTT2和A4URF0),為全面表征HCP提供了補充信息,并證明了其在監測未知高風險HCP方面的關鍵價值。蛋白A親和層析和親和沉淀過濾(ADF)的去除效率分別達到74%和91%,表明它們在清除HCP方面的有效性。陽離子交換層析(CEX)階段沒有顯著變化。值得注意的是,一些在HCCF中未檢測到的HCP在下游純化過程中被檢測到,這可能是因為基質干擾減少增強了低豐度分子的信號響應。在最終藥物中,仍檢測到三種低ppm水平的高風險HCPs:G3IIB1、G3I6T1和G3H8 V5。它們可能導致聚山梨酯和藥物降解,甚至增加免疫原性風險。盡管這三種HCPs在蛋白A親和層析后顯著減少,但在后續步驟中其清除率趨于平穩,這揭示了當前純化流程中的選擇性局限性。

總結
該研究整合了 DDA(全面分析已知和未知HCPs)、PRM(驗證特異性)和 dMRM(快速定量已知高風險 HCPs)的不同方法,實現了HCPs的全面分析,為生物制藥過程中HCPs的監測提供了高效、全面的解決方案,助力優化純化工藝、提升藥物質量可控性,符合QbD理念。但目前僅基于 CHO-K1 細胞系,可能無法覆蓋其他 CHO 亞型或變異株的 HCPs,未來可擴展至其他宿主細胞系或微生物表達系統,結合人工智能和深度學習,擴展低豐度 HCPs的特征譜圖數據,建立HCP譜圖庫共享平臺。
 
文獻
1. A Novel Strategy to Rapidly Profile and Quantify High-Risk Host Cell Proteins Using Integrated DDA-PRM-dMRM Mode. Xuan Xu, Lan Wang, Gang Wu, Shengyuan Xu, Yang Li, Ning Sheng, and Jinlan Zhang Journal of Proteome Research 2025 24 (8), 4259-4269, DOI: 10.1021/acs.jproteome.5c00369
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