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DNA甲基化揭示蘋果干旱脅迫的表觀基因組調(diào)控機(jī)制的研究_abio生物試劑品牌網(wǎng)

abiopp5個(gè)月前 (08-01)技術(shù)102
近日,西北農(nóng)林科技大學(xué)園藝學(xué)院徐記迪副教授、管清美教授和塔里木大學(xué)王江波副教授團(tuán)隊(duì)合作,通過(guò)多組學(xué)分析揭示蘋果在干旱脅迫下的表觀基因組特征。研究綜合運(yùn)用全基因組重亞硫酸鹽測(cè)序(Whole-Genome Bisulfite Sequencing, WGBS)、染色質(zhì)免疫沉淀測(cè)序(Chromatin ImmunopreciPItation Sequencing, ChIP-seq)和轉(zhuǎn)錄組測(cè)序(RNA-seq)技術(shù)的多組學(xué)整合分析,揭示了蘋果在干旱處理不同時(shí)間點(diǎn)(0天、3天、6天和9天)的DNA甲基化、組蛋白修飾和基因表達(dá)變化。研究發(fā)現(xiàn),干旱脅迫下蘋果的基因表達(dá)、DNA甲基化和組蛋白修飾均發(fā)生顯著變化,并鑒定出兩個(gè)關(guān)鍵基因MdABI5和MdOCP3,其通過(guò)組蛋白修飾調(diào)控蘋果抗旱性。相關(guān)研究成果以《An integrative multi-omics analysis of histone modifications and DNA methylation reveals the epigenomic landscape in apple under drought stress》為題發(fā)表于《Plant Biotechnology Journal》(IF:10.5)期刊。
 
標(biāo)題:An integrative multi-omics analysis of histone modifications and DNA methylation reveals the epigenomic landscape in apple under drought stress(組蛋白修飾和DNA甲基化的綜合多組學(xué)分析揭示了干旱脅迫下蘋果的表觀基因組譜) 發(fā)表時(shí)間:2025年07月07日
發(fā)表期刊:Plant Biotechnology Journal(PBJ)
影響因子:IF10.5/Q1
技術(shù)平臺(tái):WGBS、ChIP-seq、RNA-seq
作者單位:西北農(nóng)林科技大學(xué)園藝學(xué)院徐記迪、管清美等
doi: 10.1111/pbi.70173
 
表觀遺傳調(diào)控在植物發(fā)育和逆境響應(yīng)過(guò)程中發(fā)揮著關(guān)鍵作用。先前研究表明表觀遺傳修飾參與蘋果干旱響應(yīng),但其干旱響應(yīng)機(jī)制仍需要一個(gè)全面的表觀基因組學(xué)來(lái)表征。本研究在干旱處理后0天、3天、6天和9天時(shí),對(duì)蘋果屬植物湖北海棠(Malus hupehensis)進(jìn)行了轉(zhuǎn)錄組測(cè)序、DNA甲基化(WGBS)和六種組蛋白修飾(H3ac、H3K9ac、H3K14ac、H3K4me3、H3K27me3和H3K36me3)的ChIP-seq分析。研究結(jié)果揭示在干旱處理后6天的差異表達(dá)基因變化最為顯著。在干旱處理后3天基因區(qū)域周圍DNA甲基化水平達(dá)到最高。在干旱處理下,六種組蛋白修飾的整體富集水平略有下降。上調(diào)的干旱響應(yīng)基因中,具有較高變化倍數(shù)(fold changes)基因與H3K27me3低水平修飾相關(guān),而具有較低變化倍數(shù)的上調(diào)基因則與H3K4me3高水平修飾相關(guān)。許多干旱響應(yīng)基因(如MYB88、NCED3和JAZ1)受表觀遺傳修飾調(diào)控。研究驗(yàn)證了MdABI5(受H3K14ac和H3K27me3調(diào)控)和MdOCP3(受H3K9ac和H3K36me3調(diào)控)這兩個(gè)受多種表觀遺傳修飾調(diào)控的候選干旱響應(yīng)基因的功能轉(zhuǎn)基因蘋果在干旱條件下的表型顯示,MdABI5和MdOCP3正向調(diào)控蘋果的抗旱性。本研究結(jié)果為表觀遺傳修飾的分子機(jī)制研究提供了新見(jiàn)解,并為提高蘋果的抗旱性提供了理論依據(jù)。

研究方法
(1)植物材料與干旱處理:3月齡蘋果(Malus hupehensis)幼苗,種植于溫室中。干旱處理通過(guò)逐步減少土壤水分進(jìn)行,分別在0天(A0d)、3天(A3d)、6天(A6d)和9天(A9d)取樣。取樣時(shí),選取每株植物的第4-6片葉作為生物學(xué)重復(fù)樣本
(2)轉(zhuǎn)錄組測(cè)序(RNA-seq):檢測(cè)基因表達(dá)水平。
(3)全基因組重亞硫酸鹽測(cè)序(WGBS):分析全基因組水平的DNA甲基化狀態(tài)。
(4)染色質(zhì)免疫沉淀測(cè)序(ChIP-seq):分析H3ac、H3K9ac、H3K14ac、H3K4me3、H3K27me3和H3K36me3六種組蛋白修飾水平。
(5)轉(zhuǎn)基因植物構(gòu)建與表型分析:將MdABI5和MdOCP3基因?qū)胩O果GL-3品種中,構(gòu)建過(guò)表達(dá)和RNA干擾轉(zhuǎn)基因株系。通過(guò)PCR和RT-qPCR驗(yàn)證轉(zhuǎn)基因株系,并在干旱條件下評(píng)估其表型和生理指標(biāo)。
 
結(jié)果圖形
(1)不同干旱處理下蘋果的動(dòng)態(tài)基因表達(dá)變化
研究通過(guò)轉(zhuǎn)錄組分析發(fā)現(xiàn),在干旱處理3天(A3d)時(shí),蘋果中有3041個(gè)差異表達(dá)基因(DEGs),表明許多基因在干旱早期就已經(jīng)響應(yīng)。隨著干旱時(shí)間延長(zhǎng),DEGs數(shù)量在6天(A6d)時(shí)達(dá)到峰值(3818個(gè)),9天(A9d)時(shí)略有下降(3816個(gè))。基因表達(dá)趨勢(shì)的聚類分析顯示,大多數(shù)基因在A6d時(shí)表達(dá)量達(dá)到峰值,且與水分剝奪相關(guān)的基因在A6d時(shí)顯著富集。研究還發(fā)現(xiàn)一些基因(如TIFY10A-like、XTH33、RPM1-like和PK1)在干旱處理過(guò)程中表達(dá)量持續(xù)上調(diào)或下調(diào),這些基因可能在干旱響應(yīng)中發(fā)揮重要作用。通過(guò)對(duì)不同表達(dá)趨勢(shì)的基因組分析,結(jié)果表明其在缺水、激素響應(yīng)、離子穩(wěn)態(tài)和代謝過(guò)程等通路中顯著富集,表明A6d是蘋果干旱響應(yīng)的關(guān)鍵階段。

 
圖1:轉(zhuǎn)錄組差異分析、聚類和功能富集結(jié)果。

  (a) 湖北海棠(Malus hupehensis)在干旱處理0天、3天、6天和9天時(shí)的表型。
(b) 不同差異比較組合時(shí)期中的差異表達(dá)基因(DEGs)數(shù)量。
(c) 不同時(shí)期DEGs表達(dá)趨勢(shì)的聚類分析。
(d) 干旱處理下相鄰比較組合中DEGs的重疊情況。
(e) 不同表達(dá)趨勢(shì)基因組的功能富集比較點(diǎn)圖(第1組:Cluster 1,第2組:Cluster 3,第3組:Cluster 4,第4組:Cluster 5,第5組:Cluster 2、6、7和8)。
 
(2)蘋果響應(yīng)干旱脅迫的DNA甲基化圖譜
研究通過(guò)WGBS技術(shù)分析了蘋果在干旱處理下的DNA甲基化變化。結(jié)果顯示,在干旱處理早期(A3d),基因區(qū)域附近的DNA甲基化水平顯著增加,隨后在A6d略有下降,A9d時(shí)又略有回升。表明DNA甲基化在干旱脅迫的早期階段起著關(guān)鍵作用。研究還發(fā)現(xiàn)與對(duì)照組相比,干旱處理下蘋果的mCG、mCHG和mCHH三種DNA甲基化類型均顯著增加。此外研究分析了DNA甲基化與基因表達(dá)的相關(guān)性,發(fā)現(xiàn)差異甲基化區(qū)域(DMRs)與DEGs在A3d vs A0d、A6d vs A0d和A9d vs A3d的比較組中呈差異變化模式,這與DNA甲基化在啟動(dòng)子區(qū)域的抑制效應(yīng)一致。研究還分析了DNA甲基化在全基因組水平的分布,發(fā)現(xiàn)mCHH在基因上游2000bp區(qū)域內(nèi)的增加可能與RNA介導(dǎo)的DNA甲基化(RdDM)通路激活有關(guān),但24nt siRNA的富集并未顯著變化。這表明DNA甲基化水平變化可能受多種因子綜合調(diào)控。

  圖2:WGBS、24nt siRNA分布以及與甲基轉(zhuǎn)移酶變化對(duì)干旱響應(yīng)的特征分析。
  (a) 全基因組水平上genebody附近區(qū)域的DNA甲基化模式。
(b) 不同干旱比較組合下與高甲基化和低甲基化DMRs相關(guān)的基因數(shù)量。
(c) 不同比較組合在全基因組水平上每種甲基化類型分布的百分比。
(d) genebody區(qū)域附近24nt siRNA的富集情況。
(e) 在干旱處理下差異表達(dá)的DNA甲基化相關(guān)因子的表達(dá)模式。
 
(3)蘋果響應(yīng)干旱脅迫的組蛋白修飾變化圖譜
研究通過(guò)ChIP-seq技術(shù)分析了六種組蛋白修飾(H3ac、H3K9ac、H3K14ac、H3K4me3、H3K27me3和H3K36me3)在干旱處理下的變化。結(jié)果顯示,這些組蛋白修飾在基因區(qū)域和啟動(dòng)子區(qū)域的分布與基因表達(dá)調(diào)控密切相關(guān)。在干旱處理下,組蛋白修飾的整體水平略有下降,但某些基因區(qū)域修飾水平發(fā)生顯著變化。如與對(duì)照組相比,A6d時(shí)H3K4me3、H3K9ac和H3K14ac水平略有下降,而H3K27me3水平則顯著下降。研究還發(fā)現(xiàn)組蛋白修飾變化與基因表達(dá)變化之間存在一定相關(guān)性。如上調(diào)基因與H3K27me3低水平相關(guān),而上調(diào)基因與H3K4me3高水平相關(guān)。這些結(jié)果表明,組蛋白修飾在蘋果響應(yīng)干旱脅迫過(guò)程中發(fā)揮著重要的調(diào)控作用。

  圖3:組蛋白修飾的特征分析及差異分析。
  (a) 各種組蛋白修飾在基因區(qū)域周圍的分布情況。
(b) 在干旱處理下差異表達(dá)的組蛋白修飾相關(guān)因子的表達(dá)模式。
(c) 受組蛋白修飾調(diào)控的干旱響應(yīng)基因的重疊情況。
(d) 干旱處理下組蛋白修飾富集偏好基因的功能分析。
 
(4)組蛋白修飾和DNA甲基化變化對(duì)干旱響應(yīng)中基因表達(dá)變化的作用
研究分析了DNA甲基化和組蛋白修飾在干旱響應(yīng)中的協(xié)同作用。結(jié)果顯示,雖然在全基因組水平上DNA甲基化與組蛋白修飾分布并無(wú)明顯協(xié)同效應(yīng),但在某些基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)控中,兩種表觀遺傳修飾可能互作。例如,研究發(fā)現(xiàn)與對(duì)照組相比,A6d時(shí)有40.9%的DEGs受組蛋白修飾調(diào)控,其中H3K4me3調(diào)控基因數(shù)量最多。研究還發(fā)現(xiàn),DNA甲基化和組蛋白修飾在調(diào)控基因表達(dá)方面存在一定偏好性。例如上調(diào)基因中,低倍數(shù)變化基因主要受H3K4me3調(diào)控,而高倍數(shù)變化基因則主要受H3K27me3低水平調(diào)控。這些結(jié)果表明,DNA甲基化和組蛋白修飾在蘋果干旱響應(yīng)中通過(guò)復(fù)雜機(jī)制調(diào)控基因表達(dá)。

  圖4:六種組蛋白修飾、DNA甲基化及其在干旱處理下的調(diào)控功能之間相關(guān)性。
  (a) 由DNA甲基化和組蛋白修飾共同調(diào)控的差異表達(dá)基因以及這些調(diào)控基因表達(dá)變化的Upset圖。所有受表觀遺傳修飾調(diào)控的上調(diào)和下調(diào)DEGs與表觀遺傳修飾、log2(變化倍數(shù))和組蛋白修飾之間的關(guān)系熱圖。紅色表示與表觀遺傳修飾呈正相關(guān),而藍(lán)色表示負(fù)相關(guān)。
(b) 受不同表觀遺傳修飾調(diào)控的基因的功能富集表。紅色表示在GO通路中顯著富集,白色表示不顯著。
 
(5)組蛋白修飾調(diào)控的MdABI5正向調(diào)控蘋果抗旱性
研究發(fā)現(xiàn),MdABI5基因在干旱脅迫下表達(dá)上調(diào),且其上游的H3K14ac水平增加,H3K27me3水平降低。通過(guò)構(gòu)建MdABI5過(guò)表達(dá)(MdABI5-OE)和RNA干擾(MdABI5-RNAI)轉(zhuǎn)基因植株,研究發(fā)現(xiàn)MdABI5正向調(diào)控蘋果抗旱性。在干旱條件下,MdABI5-OE植株表現(xiàn)出更高的存活率、更低的離子滲漏率和更高的相對(duì)含水量,表明其抗旱性增強(qiáng)。而MdABI5-RNAi植株表現(xiàn)出更高的離子滲漏率和更低的存活率,表明其抗旱性減弱。這些結(jié)果表明,MdABI5通過(guò)組蛋白修飾調(diào)控蘋果抗旱性。

  圖5:MdABI5過(guò)表達(dá)(MdABI5-OE)增強(qiáng)蘋果抗旱性。
  (a) 湖北海棠(Malus hupehensis)在不同土壤含水量下干旱處理時(shí)MdABI5的表達(dá)情況。
(b) 干旱處理和對(duì)照條件下MdABI5上游H3K14ac和H3K27me3的基因組瀏覽器快照。
(c) ABI5上游組蛋白修飾的ChIP-qPCR驗(yàn)證。
(d) 在DNA水平上鑒定MdABI5-OE轉(zhuǎn)基因植株。
(e) 在RNA水平上鑒定MdABI5-OE植株。
(f) GL-3(野生型)和MdABI5-OE轉(zhuǎn)基因植株的表型。
(g) 圖(f)中GL-3和三條獨(dú)立的MdABI5-OE株系存活率。
(h) GL-3和MdABI5-OE植株在干旱處理下的葉片離子滲漏測(cè)定。
(i) GL-3和MdABI5-OE植株在干旱下的葉片相對(duì)含水量(RWC)。
(j) GL-3和MdABI5-OE植株的離體葉片在25°C下的水分丟失。
(k) GL-3和MdABI5-OE植株在干旱處理下的光合速率分析。
(l) GL-3和MdABI5-OE植株在干旱處理下的過(guò)氧化氫酶(CAT)活性。
(m) GL-3和MdABI5-OE植株在干旱處理下的過(guò)氧化氫(H2O2)含量。
 
圖6:MdABI5的RNA干擾(MdABI5-RNAi)降低蘋果抗旱性。
  (a) 在DNA水平上鑒定MdABI5-RNAi轉(zhuǎn)基因植株。
(b) 在RNA水平上鑒定MdABI5-RNAi植株。
(c) GL-3和MdABI5-RNAi轉(zhuǎn)基因植株的表型。
(d) 圖(c)中GL-3和兩條獨(dú)立的MdABI5-RNAi株系的存活率。
(e) GL-3和MdABI5-RNAi植株在干旱處理下的葉片離子滲漏測(cè)定。
(f) GL-3和MdABI5-RNAi植株在干旱下的葉片RWC。
(g) GL-3和MdABI5-RNAi植株的離體葉片在25°C下的水分丟失。
(h) GL-3和MdABI5-RNAi植株在干旱處理下的光合速率分析。
(i) GL-3和MdABI5-RNAi植株在干旱處理下的CAT活性。
(j) GL-3和MdABI5-RNAi植株在干旱處理下的H2O2含量。
 
(6)組蛋白修飾調(diào)控的MdOCP3正向調(diào)控蘋果抗旱性
研究發(fā)現(xiàn),MdOCP3基因在干旱脅迫下表達(dá)下調(diào),且其上游的H3K9ac和H3K36me3水平降低。通過(guò)構(gòu)建MdOCP3過(guò)表達(dá)(MdOCP3-OE)和RNA干擾(MdOCP3-RNAi)轉(zhuǎn)基因株系,研究發(fā)現(xiàn)MdOCP3正向調(diào)控蘋果的抗旱性。在干旱條件下,MdOCP3-OE株系表現(xiàn)出更高的存活率、更低的離子滲漏率和更高的相對(duì)含水量,表明其抗旱性增強(qiáng)。相反,MdOCP3-RNAi株系則表現(xiàn)出更高的離子滲漏率和更低的存活率,表明其抗旱性減弱。這些結(jié)果表明,MdOCP3通過(guò)組蛋白修飾調(diào)控蘋果的抗旱性。

  圖7:MdOCP3過(guò)表達(dá)(MdOCP3-OE)增強(qiáng)蘋果抗旱性。
  (a) 湖北海棠(Malus hupehensis)在不同土壤含水量下干旱處理時(shí)MdOCP3的表達(dá)情況。
(b) 干旱處理和對(duì)照條件下MdOCP3上游H3K9ac和H3K36me3的基因組瀏覽器快照。
(c) OCP3上游組蛋白修飾的ChIP-qPCR驗(yàn)證。
(d) 在DNA水平上鑒定MdOCP3-OE轉(zhuǎn)基因株系。
(e) 在RNA水平上鑒定MdOCP3-OE株系。
(f) GL-3和MdOCP3-OE轉(zhuǎn)基因植株的表型。
(g) 圖(f)中GL-3和兩條獨(dú)立的MdOCP3-OE株系的存活率。
(h) GL-3和MdOCP3-OE植株在干旱處理下的葉片離子滲漏測(cè)定。
(i) GL-3和MdOCP3-OE植株在干旱下的葉片相對(duì)含水量(RWC)。
(j) GL-3和MdOCP3-OE植株的離體葉片在25°C下的水分丟失。
(k) GL-3和MdOCP3-OE植株在干旱處理下的光合速率分析。
(l-n) 檢測(cè)GL-3和MdOCP3-OE植株在干旱處理下的過(guò)氧化氫酶(CAT)(l)、過(guò)氧化物酶(POD)(m)和丙二醛(MDA)(n)含量。
(o) 采用DAB染色檢測(cè)GL-3和MdOCP3-OE中的H2O2含量。

    圖8:MdOCP3的RNA干擾((MdOCP3-RNAi))降低了蘋果的抗旱性。
  (a) 在DNA水平上鑒定MdOCP3-RNAi轉(zhuǎn)基因株系。
(b) 在RNA水平上鑒定MdOCP3-RNAi株系。
(c) GL-3(野生型)和MdOCP3-RNAi轉(zhuǎn)基因植株的表型。
(d) 圖(c)中GL-3和三條獨(dú)立的MdOCP3-RNAi株系存活率。
(e) GL-3和MdOCP3-RNAi植株在干旱處理下的葉片離子滲漏測(cè)定。
(f) GL-3和MdOCP3-RNAi植株在干旱下的葉片相對(duì)含水量(RWC)。
(g) GL-3和MdOCP3-RNAi植株的離體葉片在25°C下的水分丟失。
(h) GL-3和MdOCP3-RNAi植株在干旱處理下的光合速率分析。
(i-k)檢測(cè)GL-3和MdOCP3-RNAi植株在干旱處理下的過(guò)氧化氫酶(CAT)(i)、過(guò)氧化物酶(POD)(j)和丙二醛(MDA)(k)含量。
(l) 采用DAB染色檢測(cè)GL-3和MdOCP3-RNAi中的H2O2含量。
 
(7)表觀遺傳修飾在干旱調(diào)控網(wǎng)絡(luò)中的作用
研究分析了表觀遺傳修飾在干旱響應(yīng)網(wǎng)絡(luò)中的作用。通過(guò)注釋已知的干旱響應(yīng)基因,研究發(fā)現(xiàn)許多基因受DNA甲基化和組蛋白修飾調(diào)控。例如,在ABA信號(hào)通路中,關(guān)鍵基因(如PYLs、PP2C、SnRKs和RAFs)受組蛋白修飾調(diào)控。與鈣離子通路和激酶級(jí)聯(lián)反應(yīng)相關(guān)的基因(如CIPKs和CPKs)也受表觀遺傳修飾調(diào)控。這些結(jié)果表明,表觀遺傳修飾在蘋果干旱響應(yīng)的信號(hào)和基因表達(dá)調(diào)控中發(fā)揮著重要作用。

  圖9:植物對(duì)干旱脅迫的感知、信號(hào)傳導(dǎo)以及ABA依賴和非依賴的轉(zhuǎn)錄調(diào)控網(wǎng)絡(luò)。
(a) 植物中與干旱脅迫感知和信號(hào)傳導(dǎo)相關(guān)的因子的表觀遺傳修飾注釋。TFs數(shù)量指在整個(gè)干旱過(guò)程中差異表達(dá)的所有轉(zhuǎn)錄因子(TFs)。
(b-c) 通過(guò)表觀遺傳修飾注釋的ABA依賴和ABA非依賴調(diào)控網(wǎng)絡(luò)。星形代表受組蛋白乙酰化修飾調(diào)控的DEGs,正方形代表受組蛋白甲基化修飾調(diào)控的DEGs,三角形代表受DNA甲基化修飾調(diào)控的DEGs。不同顏色代表不同類型的修飾。

  圖10:表觀遺傳因子及表觀遺傳調(diào)控基因的基因組快照和表達(dá)驗(yàn)證。
  (a) 基因組瀏覽器快照顯示6天干旱處理和對(duì)照中轉(zhuǎn)錄本水平與DNA甲基化和組蛋白修飾之間的關(guān)系。
(b) 在不同土壤含水量干旱處理下,受表觀遺傳修飾調(diào)控的基因和干旱響應(yīng)的表觀遺傳因子的十個(gè)差異表達(dá)基因的RT-qPCR結(jié)果。
 
結(jié)論和啟示
本研究通過(guò)多組學(xué)分析揭示了蘋果在干旱脅迫下的表觀遺傳調(diào)控機(jī)制,特別是DNA甲基化和組蛋白修飾在基因表達(dá)調(diào)控中的作用。研究發(fā)現(xiàn),DNA甲基化和組蛋白修飾在蘋果干旱響應(yīng)中通過(guò)復(fù)雜的機(jī)制調(diào)控基因表達(dá),且兩個(gè)關(guān)鍵基因MdABI5和MdOCP3通過(guò)組蛋白修飾正向調(diào)控蘋果的抗旱性。這些發(fā)現(xiàn)為理解植物抗旱的分子機(jī)制提供了新的視角,并為通過(guò)表觀遺傳修飾改良蘋果抗旱性提供了理論基礎(chǔ)。
WGBS、ChIP-seq和RNA-seq技術(shù)在本研究中發(fā)揮了重要作用,不僅揭示了全基因組水平的表觀遺傳變化,還為解析基因表達(dá)調(diào)控機(jī)制提供了有力工具。這些技術(shù)的綜合應(yīng)用為未來(lái)類似植物抗逆研究提供了方法學(xué)參考。
 
參考文獻(xiàn):
Wang S, He J, Hu B, Deng M, Li W, Guo J, Song Y, Zheng Q, Song X, Ma F, Wang J, Guan Q, Xu J. An integrative multi-omics analysis of histone modifications and DNA methylation reveals the epigenomic landscape in apple under drought stress. Plant Biotechnol J. 2025 Jul 7. doi: 10.1111/pbi.70173.

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應(yīng)用指南 | 小鼠原代小腸類器官培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)   #應(yīng)用指南# 2009 年,Hans Clevers 及其團(tuán)隊(duì)利用 Lgr5+ 腸干細(xì)胞在體外培養(yǎng)出了三維小腸類器官結(jié)構(gòu)。這種結(jié)...

血管生成實(shí)驗(yàn)步驟及常見(jiàn)問(wèn)題解析_abio生物試劑品牌網(wǎng)

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血管生成實(shí)驗(yàn)怎么做?NEST來(lái)膠你!   “1971 年,Judah Folkman 教授提出 “腫瘤生長(zhǎng)和轉(zhuǎn)移依賴于血管新生” 理論,認(rèn)為新血管的形成對(duì)于腫瘤生長(zhǎng)和轉(zhuǎn)移至關(guān)重要。”...

單細(xì)胞空間轉(zhuǎn)錄組研究CosMx SMI實(shí)驗(yàn)要點(diǎn)提示_abio生物試劑品牌網(wǎng)

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單細(xì)胞空間數(shù)據(jù)的質(zhì)量受多種因素影響,怎么樣才能讓自己的單細(xì)胞空間轉(zhuǎn)錄組研究更加順利?在選擇好CosMx SMI平臺(tái)后,需要注意哪些問(wèn)題,平臺(tái)已有哪些可參考的內(nèi)部經(jīng)驗(yàn)?本期,小編整理SMI實(shí)驗(yàn)...

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