國自然熱門領域解析：一文讀懂組蛋白修飾的奧秘_abio生物試劑品牌網
組蛋白修飾是表觀遺傳調控的核心機制之一，通過共價修飾（如甲基化、乙酰化等）改變染色質結構，從而精確調控基因表達，決定細胞的功能和發展方向。作為國家自然科學基金重點支持的研究領域，其分子機制和生物學功能已成為當前生命科學研究的焦點。接下來，我們就來深入了解組蛋白修飾的具體情況。
組蛋白結構
組蛋白是染色質的核心組成成分，其獨特的結構為基因調控奠定了堅實的物質基礎。染色質由DNA與蛋白質組成的復合物，核小體作為染色質的基本結構單元，由147個堿基對的DNA緊密纏繞在組蛋白八聚體上構成。這種結構使得長達數米的DNA能夠有序地壓縮在微米級的細胞核內，為基因的精準調控提供了空間基礎。
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組蛋白八聚體由兩個H2A、兩個H2B、兩個H3和兩個H4分子組成。在其組裝過程中，H2A與H2B先形成異二聚體，H3與H4亦形成異二聚體，兩個H3-H4二聚體相互結合形成四聚體，隨后兩側各結合一個H2A-H2B二聚體，最終構成穩定的八聚體結構，為DNA提供了穩定的纏繞支架。
值得注意的是，組蛋白存在著豐富的N末端尾巴結構。這些尾巴從核小體的表面伸出，由于缺乏穩定的二級結構，呈現出松散的構象。這種結構特點使得N末端富含的賴氨酸、精氨酸、絲氨酸等氨基酸殘基能夠充分暴露，成為組蛋白修飾的主要靶點。以H3組蛋白為例，其N末端的賴氨酸殘基可發生乙酰化、甲基化等多種修飾，這些修飾事件能夠直接影響染色質的結構動態性與基因的表達活性。
組蛋白修飾常見類型
組蛋白修飾是一個高度復雜且精密調控的過程，主要包括乙酰化、甲基化、磷酸化、泛素化等修飾類型。這些修飾事件猶如生物體內的“分子密碼”，通過改變染色質的結構狀態與功能特性，實現對基因表達的精準調控。
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乙酰化
乙酰化是研究較早且較深入的修飾類型，主要發生在組蛋白N末端的賴氨酸殘基上：
組蛋白乙酰轉移酶（ histone acetyltransferase，HAT）負責給賴氨酸殘基加上乙酰基；
而組蛋白去乙酰化酶（histone deacetylase，HDAC）則負責去除乙酰基。
當乙酰基被加上后，賴氨酸殘基的正電荷被中和，DNA與組蛋白之間的靜電引力減弱，染色質結構變得松散，DNA就能更輕松地與轉錄因子等蛋白結合，從而促進基因轉錄。例如，H3組蛋白上K9和K27的乙酰化（H3K9ac和H3K27ac），就常與活性基因的增強子和啟動子“相伴”，在細胞周期調控、增殖和凋亡等過程中發揮關鍵作用。一旦這種平衡被打破，就可能引發疾病。
引自Fallah MS, Szarics D, Robson CM, Eubanks JH. ImpAIred Regulation of Histone Methylation and Acetylation Underlies Specific Neurodevelopmental Disorders. Front Genet. 2021 Jan 8;11:613098.
甲基化
組蛋白甲基化可以發生在賴氨酸或精氨酸殘基上，且修飾位點和修飾程度（單甲基化、雙甲基化、三甲基化）不同，對基因轉錄的影響也各異。與乙酰化改變電荷不同，甲基化并不改變組蛋白的電荷性質。
精氨酸甲基化一般促進轉錄激活，而賴氨酸甲基化既可以與轉錄激活相關，也能參與轉錄抑制：
H3K4me1（組蛋白H3的K4位點單甲基化）通常標記轉錄增強子；
H3K4me3（三甲基化）標記基因啟動子，是基因活化的標志；
而H3的K9和K27位點的三甲基化（H3K9me3和H3K27me3）則是抑制信號。其中H3K27me3在胚胎干細胞中調控發育相關基因的啟動子區域，H3K9me3則在衛星重復序列、端粒等基因貧乏的染色體區域形成異染色質，讓基因“沉默”，它們還會出現在失活的X染色體上，但分布區域有所不同。
組蛋白甲基化修飾由組蛋白甲基轉移酶（histone methyltransferases，HMTs）催化，同時組蛋白去甲基化酶（histone demethylases，HDMs）能夠去除甲基標記，二者共同維持甲基化修飾的動態平衡，實現對基因表達的精細調控。
引自Fallah MS, Szarics D, Robson CM, Eubanks JH. Impaired Regulation of Histone Methylation and Acetylation Underlies Specific Neurodevelopmental Disorders. Front Genet. 2021 Jan 8;11:613098.
磷酸化
組蛋白磷酸化在細胞分裂、轉錄調控以及DNA損傷修復等過程中至關重要。所有核心組蛋白上都有可能發生磷酸化，不同的磷酸化位點具有不同的功能。例如，組蛋白H3在絲氨酸10和28上的磷酸化，以及組蛋白H2A在T120上的磷酸化，參與有絲分裂過程中染色質的致密化，調節染色質結構和功能，是細胞周期和生長的重要標志；H2AX在S139處的磷酸化（產生γH2AX）則是DNA雙鏈斷裂后最早發生的事件之一，能夠招募DNA損傷修復蛋白。
與乙酰化和甲基化相比，磷酸化更像是一個“橋梁”，建立其他修飾之間的相互作用，為效應蛋白提供結合平臺，引發下游級聯反應。
引自Banerjee T, Chakravarti D. A peek into the complex realm of histone phosphorylation. Molecular and Cellular Biology [J]. 2011 Dec;31(24):4858-4873.
泛素化
泛素化修飾主要發生于H2A和H2B組蛋白，是重要的蛋白質翻譯后修飾方式。H2A的泛素化通常與基因沉默相關，其通過改變染色質的三維結構，阻礙轉錄因子與DNA的結合，從而抑制基因表達；而H2B的泛素化則與轉錄激活過程密切相關，能夠促進染色質結構的開放，為轉錄起始復合物的組裝創造條件。此外，在DNA損傷修復過程中，泛素化修飾能夠招募相關修復蛋白，參與損傷識別、信號傳導以及修復執行等多個環節，保障基因組的完整性。
圖片來源于張卿義，張櫻子，沈凱，等.組蛋白泛素化修飾及其在DNA損傷應答中的作用[J].遺傳，2019,41(01)：2940.DOl:10.16288/j.yczz.18-112.
組蛋白修飾的“調控鐵三角”
組蛋白修飾的精準調控，離不開這個“書寫者（Writers）-擦除者（Erasers）-閱讀者（Readers）”核心系統?。
書寫者（Writers）：書寫者酶負責在組蛋白特定氨基酸殘基上添加修飾基團。例如，HAT 家族中的p300/CBP可催化H3和H4多個賴氨酸位點的乙酰化，打開染色質結構，促進基因轉錄；SUV39H1作為HMT家族成員，能夠特異性催化H3K9的甲基化，介導異染色質形成與基因沉默。這些酶往往具有高度的底物特異性和位點選擇性，確保修飾的精準性。?
擦除者（Erasers）：擦除者酶承擔著去除修飾基團的重要功能，維持修飾水平的動態平衡。HDAC1和HDAC2 可快速去除乙酰化標記，使染色質重新變得緊密，抑制基因表達；JMJD2家族的去甲基化酶則能特異性去除 H3K9me3 等甲基化修飾，逆轉基因沉默狀態。擦除者與書寫者之間的拮抗作用，使得組蛋白修飾處于動態變化之中，以適應細胞不同生理狀態的需求。?
閱讀者（Readers）：閱讀者蛋白含有特定的結構域，能夠特異性識別并結合修飾后的組蛋白。含溴域的蛋白可識別乙酰化賴氨酸，如BRD4結合H3K27ac后，招募轉錄相關復合物，促進基因轉錄；含chromodomain的蛋白可識別甲基化賴氨酸，像HP1結合H3K9me3后，誘導染色質凝集，實現基因沉默。閱讀者蛋白通過與修飾組蛋白的結合，進一步招募下游效應蛋白，將修飾信號轉化為生物學效應。
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組蛋白修飾的經典研究技術
染色質免疫沉淀技術（ChIP）是研究組蛋白修飾的經典方法。其基本原理是利用特異性抗體識別并結合帶有特定修飾的組蛋白，通過免疫沉淀的方法分離與組蛋白結合的DNA片段，經純化后可結合qPCR（ChIP-qPCR）或高通量測序（ChIP-seq）進行檢測。ChIP-seq 能在全基因組范圍內精確繪制組蛋白修飾圖譜，大大提高了研究的分辨率和準確性。
近年來，CUT&Tag、CUT&RUN等新興技術在ChIP的基礎上進行優化。相較于傳統ChIP技術，它們在實驗操作上更為簡便，大幅降低了樣本需求量，并且在數據質量上有顯著提升，能夠更高效、靈敏地檢測組蛋白修飾，為組蛋白修飾研究提供了新的高效手段，進一步推動了該領域的研究進展。
參考文獻
[1] Yang X J. The diverse superfamily of histone acetyltransferases and their roles in leukemia and solid tumors[J]. Nucleic Acids Research, 2004, 32(18): 5678-5692.?
[2] Bernstein B E, Meissner A, Lander E S. The mammalian ePIgenome[J]. Cell, 2007, 128(4): 669-681.?
[3] Simon J A, Kingston R E. Mechanisms of Polycomb group gene silencing: knowns and unknowns[J]. Nature Reviews Molecular Cell Biology, 2009, 10(11): 697-708.?
[4] Cheung P, Tanner K G, Cheung W L, et al. Synergistic methylation and phosphorylation of histone H3 and their role in chromatin transcription[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2000, 97(15): 8108-8113.?
[5] Rogakou E P, Pilch D R, Orr A H, et al. DNA double - strand breaks induce histone H2AX phosphorylation on serine 139[J]. The Journal of Biological Chemistry, 1998, 273(10): 5858-5868.?
[6] Huen M S Y, Grant R, Manke I, et al. MDC1 directly binds phosphorylated histone H2AX to regulate cellular responses to DNA double - strand breaks[J]. The Journal of Cell Biology, 2007, 172(2): 181-193.?
[7] van Attikum H, Huen M S Y, Chen J, et al. Recruitment of 53BP1 to DNA damage sites is mediated by interaction with phosphorylated histone H2AX[J]. The Journal of Cell Biology, 2007, 172(2): 131-139.
組蛋白結構
組蛋白是染色質的核心組成成分，其獨特的結構為基因調控奠定了堅實的物質基礎。染色質由DNA與蛋白質組成的復合物，核小體作為染色質的基本結構單元，由147個堿基對的DNA緊密纏繞在組蛋白八聚體上構成。這種結構使得長達數米的DNA能夠有序地壓縮在微米級的細胞核內，為基因的精準調控提供了空間基礎。
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組蛋白八聚體由兩個H2A、兩個H2B、兩個H3和兩個H4分子組成。在其組裝過程中，H2A與H2B先形成異二聚體，H3與H4亦形成異二聚體，兩個H3-H4二聚體相互結合形成四聚體，隨后兩側各結合一個H2A-H2B二聚體，最終構成穩定的八聚體結構，為DNA提供了穩定的纏繞支架。值得注意的是，組蛋白存在著豐富的N末端尾巴結構。這些尾巴從核小體的表面伸出，由于缺乏穩定的二級結構，呈現出松散的構象。這種結構特點使得N末端富含的賴氨酸、精氨酸、絲氨酸等氨基酸殘基能夠充分暴露，成為組蛋白修飾的主要靶點。以H3組蛋白為例，其N末端的賴氨酸殘基可發生乙酰化、甲基化等多種修飾，這些修飾事件能夠直接影響染色質的結構動態性與基因的表達活性。
組蛋白修飾常見類型
組蛋白修飾是一個高度復雜且精密調控的過程，主要包括乙酰化、甲基化、磷酸化、泛素化等修飾類型。這些修飾事件猶如生物體內的“分子密碼”，通過改變染色質的結構狀態與功能特性，實現對基因表達的精準調控。
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乙酰化乙酰化是研究較早且較深入的修飾類型，主要發生在組蛋白N末端的賴氨酸殘基上：
組蛋白乙酰轉移酶（ histone acetyltransferase，HAT）負責給賴氨酸殘基加上乙酰基；
而組蛋白去乙酰化酶（histone deacetylase，HDAC）則負責去除乙酰基。
當乙酰基被加上后，賴氨酸殘基的正電荷被中和，DNA與組蛋白之間的靜電引力減弱，染色質結構變得松散，DNA就能更輕松地與轉錄因子等蛋白結合，從而促進基因轉錄。例如，H3組蛋白上K9和K27的乙酰化（H3K9ac和H3K27ac），就常與活性基因的增強子和啟動子“相伴”，在細胞周期調控、增殖和凋亡等過程中發揮關鍵作用。一旦這種平衡被打破，就可能引發疾病。
引自Fallah MS, Szarics D, Robson CM, Eubanks JH. ImpAIred Regulation of Histone Methylation and Acetylation Underlies Specific Neurodevelopmental Disorders. Front Genet. 2021 Jan 8;11:613098.
甲基化
組蛋白甲基化可以發生在賴氨酸或精氨酸殘基上，且修飾位點和修飾程度（單甲基化、雙甲基化、三甲基化）不同，對基因轉錄的影響也各異。與乙酰化改變電荷不同，甲基化并不改變組蛋白的電荷性質。
精氨酸甲基化一般促進轉錄激活，而賴氨酸甲基化既可以與轉錄激活相關，也能參與轉錄抑制：
H3K4me1（組蛋白H3的K4位點單甲基化）通常標記轉錄增強子；
H3K4me3（三甲基化）標記基因啟動子，是基因活化的標志；
而H3的K9和K27位點的三甲基化（H3K9me3和H3K27me3）則是抑制信號。其中H3K27me3在胚胎干細胞中調控發育相關基因的啟動子區域，H3K9me3則在衛星重復序列、端粒等基因貧乏的染色體區域形成異染色質，讓基因“沉默”，它們還會出現在失活的X染色體上，但分布區域有所不同。
組蛋白甲基化修飾由組蛋白甲基轉移酶（histone methyltransferases，HMTs）催化，同時組蛋白去甲基化酶（histone demethylases，HDMs）能夠去除甲基標記，二者共同維持甲基化修飾的動態平衡，實現對基因表達的精細調控。
引自Fallah MS, Szarics D, Robson CM, Eubanks JH. Impaired Regulation of Histone Methylation and Acetylation Underlies Specific Neurodevelopmental Disorders. Front Genet. 2021 Jan 8;11:613098.
磷酸化
組蛋白磷酸化在細胞分裂、轉錄調控以及DNA損傷修復等過程中至關重要。所有核心組蛋白上都有可能發生磷酸化，不同的磷酸化位點具有不同的功能。例如，組蛋白H3在絲氨酸10和28上的磷酸化，以及組蛋白H2A在T120上的磷酸化，參與有絲分裂過程中染色質的致密化，調節染色質結構和功能，是細胞周期和生長的重要標志；H2AX在S139處的磷酸化（產生γH2AX）則是DNA雙鏈斷裂后最早發生的事件之一，能夠招募DNA損傷修復蛋白。
與乙酰化和甲基化相比，磷酸化更像是一個“橋梁”，建立其他修飾之間的相互作用，為效應蛋白提供結合平臺，引發下游級聯反應。
引自Banerjee T, Chakravarti D. A peek into the complex realm of histone phosphorylation. Molecular and Cellular Biology [J]. 2011 Dec;31(24):4858-4873.
泛素化泛素化修飾主要發生于H2A和H2B組蛋白，是重要的蛋白質翻譯后修飾方式。H2A的泛素化通常與基因沉默相關，其通過改變染色質的三維結構，阻礙轉錄因子與DNA的結合，從而抑制基因表達；而H2B的泛素化則與轉錄激活過程密切相關，能夠促進染色質結構的開放，為轉錄起始復合物的組裝創造條件。此外，在DNA損傷修復過程中，泛素化修飾能夠招募相關修復蛋白，參與損傷識別、信號傳導以及修復執行等多個環節，保障基因組的完整性。
圖片來源于張卿義，張櫻子，沈凱，等.組蛋白泛素化修飾及其在DNA損傷應答中的作用[J].遺傳，2019,41(01)：2940.DOl:10.16288/j.yczz.18-112.
組蛋白修飾的“調控鐵三角”組蛋白修飾的精準調控，離不開這個“書寫者（Writers）-擦除者（Erasers）-閱讀者（Readers）”核心系統?。
書寫者（Writers）：書寫者酶負責在組蛋白特定氨基酸殘基上添加修飾基團。例如，HAT 家族中的p300/CBP可催化H3和H4多個賴氨酸位點的乙酰化，打開染色質結構，促進基因轉錄；SUV39H1作為HMT家族成員，能夠特異性催化H3K9的甲基化，介導異染色質形成與基因沉默。這些酶往往具有高度的底物特異性和位點選擇性，確保修飾的精準性。?
擦除者（Erasers）：擦除者酶承擔著去除修飾基團的重要功能，維持修飾水平的動態平衡。HDAC1和HDAC2 可快速去除乙酰化標記，使染色質重新變得緊密，抑制基因表達；JMJD2家族的去甲基化酶則能特異性去除 H3K9me3 等甲基化修飾，逆轉基因沉默狀態。擦除者與書寫者之間的拮抗作用，使得組蛋白修飾處于動態變化之中，以適應細胞不同生理狀態的需求。?
閱讀者（Readers）：閱讀者蛋白含有特定的結構域，能夠特異性識別并結合修飾后的組蛋白。含溴域的蛋白可識別乙酰化賴氨酸，如BRD4結合H3K27ac后，招募轉錄相關復合物，促進基因轉錄；含chromodomain的蛋白可識別甲基化賴氨酸，像HP1結合H3K9me3后，誘導染色質凝集，實現基因沉默。閱讀者蛋白通過與修飾組蛋白的結合，進一步招募下游效應蛋白，將修飾信號轉化為生物學效應。
圖片來源于網絡
組蛋白修飾的經典研究技術染色質免疫沉淀技術（ChIP）是研究組蛋白修飾的經典方法。其基本原理是利用特異性抗體識別并結合帶有特定修飾的組蛋白，通過免疫沉淀的方法分離與組蛋白結合的DNA片段，經純化后可結合qPCR（ChIP-qPCR）或高通量測序（ChIP-seq）進行檢測。ChIP-seq 能在全基因組范圍內精確繪制組蛋白修飾圖譜，大大提高了研究的分辨率和準確性。
近年來，CUT&Tag、CUT&RUN等新興技術在ChIP的基礎上進行優化。相較于傳統ChIP技術，它們在實驗操作上更為簡便，大幅降低了樣本需求量，并且在數據質量上有顯著提升，能夠更高效、靈敏地檢測組蛋白修飾，為組蛋白修飾研究提供了新的高效手段，進一步推動了該領域的研究進展。
參考文獻
[1] Yang X J. The diverse superfamily of histone acetyltransferases and their roles in leukemia and solid tumors[J]. Nucleic Acids Research, 2004, 32(18): 5678-5692.?
[2] Bernstein B E, Meissner A, Lander E S. The mammalian ePIgenome[J]. Cell, 2007, 128(4): 669-681.?
[3] Simon J A, Kingston R E. Mechanisms of Polycomb group gene silencing: knowns and unknowns[J]. Nature Reviews Molecular Cell Biology, 2009, 10(11): 697-708.?
[4] Cheung P, Tanner K G, Cheung W L, et al. Synergistic methylation and phosphorylation of histone H3 and their role in chromatin transcription[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2000, 97(15): 8108-8113.?
[5] Rogakou E P, Pilch D R, Orr A H, et al. DNA double - strand breaks induce histone H2AX phosphorylation on serine 139[J]. The Journal of Biological Chemistry, 1998, 273(10): 5858-5868.?
[6] Huen M S Y, Grant R, Manke I, et al. MDC1 directly binds phosphorylated histone H2AX to regulate cellular responses to DNA double - strand breaks[J]. The Journal of Cell Biology, 2007, 172(2): 181-193.?
[7] van Attikum H, Huen M S Y, Chen J, et al. Recruitment of 53BP1 to DNA damage sites is mediated by interaction with phosphorylated histone H2AX[J]. The Journal of Cell Biology, 2007, 172(2): 131-139.
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