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脂多糖 (LPS) 在炎癥造模中的應用_abio生物試劑品牌網

abiopp7個月前 (06-06)技術54
LPS,它與炎癥反應有著千絲萬縷的聯系......
 LPS 何方神圣?在體內如何誘發炎癥反應?
 如何選擇 LPS 構建"合拍"的炎癥疾病模型?
 來來來,一起了解下!


Section.01
LPS 與炎癥發生

噓,可不要小瞧了它!脂多糖 (Lipopolysaccharide;LPS) ,是由脂質和多糖組成的大分子,廣泛存在于革蘭氏陰性菌細胞壁中,又被稱為內毒素,它可是具有強烈的促炎性質[1]

LPS 結構

LPS 是由脂質 A、核心多糖和 O-特異性抗原組成。包含這三個組分的為光滑型 S-LPS,缺乏 O 抗原的則被稱為粗糙型 R-LPS,或脂寡糖 (LOS)[2]
 

圖 1. LPS 的經典結構 [2]

? 脂質 A: LPS 的脂質部分,嵌在細菌外膜的磷脂層中,是內毒素的主要毒性成分。不同革蘭氏陰性菌的脂質 A 結構具有一定差異,但在同一菌株中結構基本相同。脂質 A 的任何結構變化都可能改變 LPS 的免疫效力并決定其毒性。此外,脂質 A 對于宿主受體的特異性識別非常重要,能夠刺激宿主的免疫反應[2]

? 特異性抗原:由多個寡糖重復單位組成,位于 LPS 的最外層,是 LPS 中變化最大的部分。O-特異性抗原的糖殘基種類、長度、排列順序和連接方式具有菌株特異性,決定了細菌的抗原特異性[2]。根據 O 抗原的差異可將大腸桿菌分為不同的血清群,如 O55、O111 等。

? 核心多糖:連接了 O-特異性抗原和脂質 A。由庚糖、半乳糖等組成,結構相對保守[2]
LPS 誘導炎癥反應


LPS 與 TLR4

TLR4Toll 樣受體 4,可在單核細胞、巨噬細胞和樹突細胞等髓樣細胞中表達,是重要的細胞表面模式識別受體,負責啟動和維持宿主的炎癥反應[2]

LPS 主要通過其經典受體 Toll 樣受體 4 (TLR4) 誘導強烈的炎癥反應。LPS 進入宿主體內,會與 LPS 結合蛋白 (LBP) 結合,然后進一步與細胞膜上的 CD14 (CD14 是很多免疫細胞的 GPI 錨定膜蛋白) 結合,形成 CD14-LPS 復合物。這一結合過程促使 LPS 與 TLR4-MD2 復合物相互作用,進而激活細胞內的信號通路[2][3]

圖 2. LPS 作用機制[2]

細胞內 LPS/TLR4 下游信號傳導主要分為兩類,MyD88 依賴性通路和 TRIF 依賴性通路。它們分別介導促炎細胞因子和 I 型干擾素基因的激活[2][4]

? 在 MyD88 依賴性通路中:活化的 MyD88 可募集并激活 IRAK4、IRAK1 和 IRAK2,接著與 TRAF6 發生相互作用。進一步激活 TAK1-TAB1 復合物,刺激 IKKα/IKKβ 復合物,然后誘導 NF-κB 等轉錄因子核轉位,啟動炎癥細胞因子基因的轉錄,促使細胞釋放如 IL-1β、IL - 6、TNF-α 等多種炎癥細胞因子。

? 在 TRIF 介導 MyD88 非依賴性通路中:TRIF 通過招募 TRAF3 可激活 IRF3,然后,IRF3 與 IRF7 形成同源或異源二聚體,進而轉錄 IFN 和 IFN 誘導型基因,誘導 IFN-α 和 IFN-β 釋放。同時,TRIF 也可以通過招募 TRAF6 激活 NF-κB。此外,除了經典的 LBP-CD14-TLR4 途徑外,LPS 還可以通過 Caspase 途徑和 TRP 通道等激活免疫細胞。

總之,上述因素都可以促進炎癥信號并引起免疫反應。

Section.02
LPS: 炎癥造模好幫手


通過前面的介紹,我們了解了 LPS 的定義以及它如何通過復雜的信號通路激活細胞內的炎癥反應。鑒于 LPS 具備強大的促炎特性,這使其成為我們構建誘導炎癥模型的得力助手!

首先,解答大家在選購 LPS 時的一個小疑惑!

MCE 網站為啥子有十幾種 LPS?它們名字后長長長長長長的后綴是什么?

前面我們提到,LPS 是細菌細胞壁的成分。So,MCE 網站上不同的 LPS 代表它們來自于不同的細菌。

小貼士:
舉個例子,我們在誘導炎癥模型中常用的 LPS, from E. coli O55: B5,它是來自于大腸桿菌 O55: B5 血清型的內毒素。其中,大腸桿菌血清型是大腸桿菌的一種分類方式,O55 代表了特異性 O 鏈中 O 抗原的一種特定類型,B5 表示鞭毛抗原的一種類型。
 

下面,我們就一起了解一下 LPS 可以誘導哪些模型以及一些注意事項~

一、體外細胞炎癥模型[5][6][7][8]

1. 推薦的 LPS 類型 (排名有先后順序哦~)
1) Lipopolysaccharides, from E. coli O55: B5  (廣泛使用!)
2) Lipopolysaccharides, from E. coli O111: B4  (廣泛使用!)
3) Lipopolysaccharides, from P. gingivalis  (牙周炎相關研究)

2. 常用細胞類型:
1) 巨噬細胞,如 RAW 264.7、BMDMs;
2) 小膠質細胞,如 N9、原代細胞;
3) 腫瘤細胞,如 Caco-2、A549 和 PC3。

3. 參考濃度范圍和處理時間:
0.1-10 μg/mL;1-24 h。

4. 推薦檢測指標:
1) 上清或細胞中炎癥因子:IL-1β、IL-6 及 TNF-α 等 (ELISA/qPCR/WB)
2) NO 釋放/NO 代謝物含量 (Kits 檢測)
3) 炎癥基因:iNOS、NF-kB 及 NLRP3 等 (qPCR/WB)
4) 細胞活力:CCK-8 或 MTT。

5. 注意事項:
1) 在正式實驗前,應根據細胞系和 LPS 來源等查找相關參考文獻,進行濃度時間梯度的篩選以確定最優的實驗方案。
2) LPS 刺激細胞不一定會引起細胞死亡,因此不宜僅僅通過檢測細胞活力來確定 LPS 造模濃度和時間,建議檢測炎癥因子的表達和分泌
3) 在 LPS 刺激細胞的過程中,應定期觀察細胞的形態變化,過高濃度可能引發細胞毒性,過低濃度則可能無法有效損傷細胞。
4) 一定濃度的 DMSO 可顯著抑制 LPS 誘導的炎癥反應,建議用 PBS 或 ddH2O 溶解。
5) 在體外炎癥模型構建研究中,Lipopolysaccharides, from E. coli O55: B5 和 Lipopolysaccharides, from E. coli O111: B4 是應用最為廣泛的 LPS,推薦使用!若開展牙周炎相關研究時,也可選用 Lipopolysaccharides, from P. gingivalis

二、體內動物模型

 
三、神經系統疾病研究

 
除了上述常見的 LPS 誘導的炎癥疾病模型外,LPS 還可用于神經系統疾病的研究。

圖 2. LPS 作用機制[2]

注意事項:
1) 在 LPS 誘導動物模型前,應根據實驗目的、動物類型等,查找相關參考文獻,進行預實驗,以確定最優的實驗方案。
2) 在 LPS 給藥后,不同的炎癥因子,其含量峰值出現的時間點可能不一致,建議根據參考文獻確定實驗方案,以及預實驗時應多選幾個時間點檢測。
3) LPS 溶解后可在 -20℃ 穩定保存約一個月,-80℃ 約 6 個月。LPS 需避光保存,并避免反復凍融。由于內毒素具有較強的吸附性,建議儲存于硅烷化容器內。如果使用玻璃容器,使用前請確保充分混合,以保證 LPS 完全重新溶解 (若 LPS 濃度超過 1 mg/mL,則對小瓶側面的吸附可忽略不計)

Section.03
小結


寶子們,今天小 M 帶著大家梳理了 LPS 的相關知識。面對五花八門的 LPS,大家再也不用犯愁啦。希望這些知識能幫助大家輕松拿捏實驗,在炎癥研究領域發光發熱!如果覺得這篇 LPS 干貨秘籍有幫助,別忘了點贊、分享哦~

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[1] Bertani B, et al. Function and Biogenesis of Lipopolysaccharides. EcoSal Plus. 2018 Aug;8(1):10.1128/ecosalplus.ESP-0001-2018. 
[2] Zhang X, et al. Application of lipopolysaccharide in establishing inflammatory models. Int J Biol Macromol. 2024 Nov;279(Pt 4):135371.
[3] Cohen J. The immunopathogenesis of sepsis. Nature. 2002 Dec 19-26;420(6917):885-91.
[4] Lu YC, et al, Ohashi PS. LPS/TLR4 signal transduction pathway. Cytokine. 2008 May;42(2):145-151.
[5] Huang S, et al. Disruption of the Na+/K+-ATPase-purinergic P2X7 receptor complex in microglia promotes stress-induced anxiety. Immunity. 2024 Mar 12;57(3):495-512.e11.
[6] Guo D, et al. Synergistic rheumatoid arthritis therapy by interrupting the detrimental feedback loop to orchestrate hypoxia M1 macrophage polarization using an enzyme-catalyzed nanoplatform. Bioact Mater. 2024 Jul 23;41:221-238.
[7] Tezcan G, et al. Azithromycin and Ceftriaxone Differentially Activate NLRP3 in LPS Primed Cancer Cells. Int J Mol Sci. 2022 Aug 22;23(16):9484.
[8] Park J, et al. Fucoidan inhibits LPS-induced inflammation in vitro and during the acute response in vivo. Int Immunopharmacol. 2017 Feb;43:91-98. 
[9] Li CC, et al. Suppression of Dendritic Cell-Derived IL-12 by Endogenous Glucocorticoids Is Protective in LPS-Induced Sepsis. PLoS Biol. 2015 Oct 6;13(10):e1002269.
[10] Rialdi A, et al. Topoisomerase 1 inhibition suppresses inflammatory genes and protects from death by inflammation. Science. 2016 May 27;352(6289):aad7993.
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[12] Makrecka-Kuka M, et al. Inhibition of CPT2 exacerbates cardiac dysfunction and inflammation in experimental endotoxaemia. J Cell Mol Med. 2020 Oct;24(20):11903-11911.
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